實驗研究中，經常要采集實驗動物的血液進行常規質量檢測、細胞學實驗或進行生物化學分析，故必須掌握正確的采集血液的技術。采血方法的選擇，主要決定于實驗的目的和所需血量以及動物種類。

    (一)剪尾采血：需血量很少時常用本法，如作紅、白細胞計數、血紅蛋白測定、制作血涂片等可與此法。動物麻醉后，將尾尖剪去約5mm，從尾部向尾尖部an摩，血即從斷端流出。也可用刀割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出。如不麻醉，采血量較小。采血結束后，消毒、止血。用此法每只鼠可采血10余次。小鼠可每次采血約0.1ml，大鼠約0.4ml。

    (二)眼眶后靜脈叢采血：穿刺采用一根特制的長7～10cm硬的玻璃取血管,其一端內徑為1 ～1.5mm，另一端逐漸擴大，細端長約1cm即可，將取血管浸入1％肝素溶液，干燥后使用。采血時，左手拇指及食指抓住鼠兩耳之間的皮膚使鼠固定，并輕輕壓迫頸部兩側，阻礙靜脈回流，使眼球充分外突，提示眼眶后靜脈叢沖血。右手持取血管，將其插入內眼角與眼球之間，輕輕向眼底方向刺入，當感到有阻力時即停止刺入，旋轉取血管以切開靜脈叢，血液即流入取血管中。采血結束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。用本法在短期內可重復采血。小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠一次可采血0.5～1.0ml。

    (三)頸(股)靜脈或頸(股)動脈采血：將鼠麻醉，剪去一側頸部外側被毛，作頸靜脈或頸動脈分離手術,用注射器即可抽出所需血量。大鼠多采用股靜脈或股動脈,方法是：大鼠經麻醉后，剪開腹股溝處皮膚，即可看到股靜脈，把此靜脈剪斷或用注射器采血即可，股動脈較深需剝離出，再采血。

    (四)摘眼球采血：此法常用于鼠類大量采血。采血時,用左手固定動物,壓迫眼球，盡量使眼球突出，右手用鑷子或止血鉗迅速摘除眼球，眼眶內很快流出血液。

    (五)斷頭采血：用剪子迅速剪掉動物頭部，立即將動物頸朝下，提起動物，血液可流入已準備好的容器中。