要想底氣十足地秀出你的WB實驗結果，單單內參對照就是一門學問。在對靶蛋白進行分析時，首先考慮是否等量上樣，其次考慮信號是否屬于檢測的線性范圍。那么，內參蛋白就尤為重要！

通常，感覺內參蛋白就是 β-actin 或 GAPDH 等。實際上，可以選擇的內參有很多，而選擇內參有一定的標準。，實驗條件不能改變內參蛋白上樣量。第二，對照內參的分子量必須與靶蛋白不同。第三，也是重要的一點，檢測到的內參蛋白和靶蛋白的信號必須在一個線性范圍內，否則你會發現你的條帶無法進行定量。

然而，實際操作中，很多同學沒有意識到上述的第三個標準。他們認為，印跡上的內參蛋白數量與細胞數量成正比，但這可能是錯誤性的假設而已，特別是使用單個內參蛋白對多種 WB 實驗進行標準化時。實際上，沒有一種內參蛋白能同時滿足以上3 點標準，又適用于你各種不同靶點的實驗。通常內參蛋白遠比靶蛋白豐富得多。在同一稀釋度下，測定內參和靶蛋白時，內參蛋白的信號可能較為飽和，甚至會超過檢測線性動態范圍，這就導致不能報告出泳道之間的差異。

當然 WB 的信號也與檢測方法緊密相關。與膠片相比，使用電荷耦合器件 (CCD) 相機檢測增強型化學發光 (ECL) 可產生出色的線性動態范圍。如果數字信號飽和，則可以使用軟件設置來顯示紅色像素。經證實，熒光掃描（使用與熒光染料而不是過氧化物酶偶聯的二抗）可避免發光化學的固有限制，因而好。所以在設置實驗時，采用這些方法可能意味著少的梯度稀釋次數。但如果你的實驗室無法使用新好的技術，你也可以使用傳統ECL 和膠片獲得較好的數據，但需要你花時間設置實驗，解決等量上樣和動態范圍問題。

既往還有文獻推薦在做實驗前，好考慮使用 5 個內參蛋白，這有助于你發現至少一個（好的時候多個）在靶蛋白線性范圍內的內參，但使用多個內參蛋白存在耗費時間、試劑的問題，特別是樣品珍貴的情況下。所以相對可行的是測定每個樣品泳道中的總蛋白上樣量，無需探測多個內參蛋白。對每個泳道的所有蛋白條帶或多個離散條帶進行染色和掃描，同時還要確保染色劑不會干擾后續的免疫檢測。

對于許多研究生和博士后，可能會覺得進行 WB 實驗是“常規程序”。但也不要忘了，解釋實驗的數據時，細節決定成敗。仔細考慮樣品制備、轉移條件和一抗等問題，將幫助你避免出現失誤。到了文章發表的時候，記得提供所有詳細信息，以便其他人準確評估結果并重復做出實驗。這才是負責地進行 WB 實驗嘛